抗肿瘤药效评价时,你以为只是测量肿瘤体积那么简单吗?

发布日期:2018-05-10

导语

大家好,今天小编为大家转载了一篇来自 邦耀实验室” (微信ID:bioraylab的小文。来聊聊抗肿瘤药物在进行临床前有效性研究时,我们常常会遇到诸多问题,如:何时给药?给药周期多久?何时开始记录数据,又该记录哪些指标(动物体重、肿瘤体积、瘤重等等)?此时我们查阅各种文献,却发现文中的描述各不相同,似乎难以找到一个统一的标准。本期,我们就参考我国药品审评中心发布的《细胞毒类抗肿瘤药物非临床研究技术指导原则》、《抗肿瘤药效学指导原则》并结合近年来发表的相关文献,简单总结一下药效评价的相关内容及注意事项。


如下图在新药申报时,评价候选抗肿瘤化合物有效性的实验中,主要包括实验的设计、药物实施及药效评价等3个方面:

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图1. 药效学研究的路线图[1]


一、给药时间


从伦理学的角度出发,一个新的细胞毒类抗肿瘤药物最初的临床受试者均应是晚期的、其他手段治疗无效的患者。与之对应,临床前试验也应该在动物肿瘤生长至一定程度时开始给药,并且若肿瘤体积太小,动物体内残留的NK细胞可能抑制肿瘤的生长,干扰对药效的观察,故不主张动物接种肿瘤细胞后即刻开始给药。通常待移植肿瘤至少生长至约100mm3后将动物随机分组。并于当天给药[1]。若是转移模型,一般是一旦发生转移立即给药。


二、给药频率及周期


应根据受试物的药代动力学特点、毒性反应等确定给药频率及周期,如果多次给药的话,一般要结合药物代谢特点,通过血药浓度来判定药物在体内的稳态时的给药间隔,且稳态浓度需要在治疗窗内,一般间隔1-2天给药一次。


三、人道终点的设定


考虑动物福利与伦理,必须设置适当的人道终点,主要包括:肿瘤负担应小于10%体重;在成年小鼠中,任何一个维度肿瘤不应该超过20mm(大鼠中为≤40mm);肿瘤转移或快速增长造成溃烂、坏死或感染,干扰进食或妨碍行走;若发生以上任何一种情况时必须终止实验,实行安乐死。


四、观察指标


肿瘤体积:推荐使用测量瘤径的方法,动态观察受试物的抗肿瘤效应。肿瘤直径的测量次数根据移植瘤的生长情况而定,一般每周2-3次(隔天测量一次)。肿瘤体积的计算公式为:V =0.52×a×b2 或π/6×a×b×c。其中a、b、c分别表示长宽高。由于此两公式的相关性极好,可采用任一公式[3]


动物体重等安全性指标:在试验中还应该观测与药物安全性有关的指标,如每次测量肿瘤体积时应记录动物体重和死亡率,将治疗组的这些数据与标准治疗对照组进行比较,对于判断药物的安全性和开发前景具有重要的意义。


肿瘤转移情况:对于原位荷瘤模型,我们还需要实时观察肿瘤转移情况。


五、评价标准


以裸鼠皮下移植瘤模型为例,主要包括相对肿瘤增殖率、肿瘤生长曲线、瘤重、动物体重等评价指标。


1. 绘制相对肿瘤增殖率T/C 图表或曲线


根据测量结果计算出相对肿瘤体积(relative tumor volume, RTV),RTV= Vt/V0。其中V0为分笼给药时(即d0)测量所得肿瘤体积,Vt为每一次测量时的肿瘤体积。抗肿瘤活性评价指标为相对肿瘤增殖率T/C(%)如下:


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举例:如下图2为检测药物MONCOT对异种移植瘤生长的影响,当肿瘤生长体积约为110mm3时开始给药,MONCPT(受试药物)和Irinotican(阳性药物)每2天肌肉注射一次,共15天,并于第16天处死小鼠。如下为动态记录的相对肿瘤增殖率(T/C):


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图2. MONCPT对人膀胱癌5637移植瘤的治疗效果[4]


2. 小鼠瘤重


为了有更加直观的数据结果,试验结束后,可以通过剥离瘤块,称量,并拍照来表现治疗效果;或将小鼠处死后摆放并拍整鼠(带瘤子)照片,并计算肿瘤生长抑制率:治疗组平均瘤重—模型对照组平均瘤重/模型对照组平均瘤重>40%则代表药物有效。如下图3左为前列腺癌皮下荷瘤后剥离的瘤块:


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图3. 前列腺癌荷瘤小鼠的瘤重(左)及生长曲线(右)[5]


3. 绘制肿瘤生长曲线


除了记录相对增殖率,不少文献中一般会绘制肿瘤生长曲线,即将肿瘤体积变化对时间作出生长曲线,可由曲线的斜率变化判断药物抑制肿瘤生长的作用。如上图3(右)与对照组相比较,腹腔注射(i.p)AIL(2mg/kg)和口服(o.p)AIL(5mg/kg)明显抑制了前列腺癌肿瘤的生长[5]。


4. 小鼠体重曲线


小鼠体重曲线可以体现药物的安全性。如下图4所示,实验组(i.p.2mg/kg)与对照组相比,小鼠体重无明显差异(主要指下降趋势),而实验组(o.p.5mg/kg)时,却导致小鼠体重明显下降,说明高浓度的口服给药会存在一定的毒副作用 [5]。


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图4. 前列腺癌荷瘤小鼠体重[5]


5. 受试物与阳性对照药物的效果比较


在毒性相当(主要表现为动物体重下降相当)的情况下,对受试物治疗组应与阳性对照组相比,是否更具有安全性及有效性,是评价是否有必要进入临床试验的指标之一。


6. 绘制生存曲线


生命延长率是评价抗肿瘤药物的重要标准,但是小鼠皮下荷瘤几乎很难死亡,并且考虑到动物福利与伦理学,所以生命延长率并不是理想的观测指标。若需要绘制生存曲线,现在文献多是人为设置某个人道终点,如皮下肿瘤体积到1000mm3时,认为动物死亡,进而绘制生存曲线。对于原位荷瘤一般以发生转移绘制生存曲线。


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 图5. 以肿瘤体积1000mm3为人道终点绘制生存曲线[6]


以上就是综合相关资料对抗肿瘤药物药效评价一些总结,希望大家可以受益。


参考文献:

[1] 药品审评中心,《细胞毒类抗肿瘤药物非临床研究技术指导原则》,《抗肿瘤药效学指导原则》.

[2] Festing M F, Altman D G. Guidelines for the Design and Statistical Analysis of Experiments Using Laboratory Animals[J]. Ilar Journal, 2002, 43(4): 244-258.

[3] Tomayko M M, Reynolds C P. Determination of subcutaneous tumor size in athymic (nude) mice[J]. Cancer Chemotherapy and Pharmacology, 1989, 24(3): 148-154.

[4] 杨晓春. 新型抗肿瘤化合物MONCPT的药效学及机制研究[D].浙江大学,2010.

[5] He, Y., et al. Ailanthone targets p23 to overcome MDV3100 resistance in castration-resistant prostate cancer. Nature communications 7, 13122 (2016).

[6] Jin H, Wan C,Zou Z, et al. Tumor Ablation and TherapeuticImmunity Induction by an Injectable Peptide Hydrogel, ACS Nano 2018, 12,3295−3310.